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18753190152
適用范圍:
用于血液、血球粉、淋巴結(jié)、脾臟、扁桃體中非洲豬瘟病毒核酸的檢測。
注意事項:
1 實驗室應(yīng)至少分三個區(qū):樣品處理區(qū)、反應(yīng)混合物配制區(qū)和檢測區(qū)。
2 各區(qū)物品均為專用,不得交叉使用,避免污染。檢測結(jié)束后,應(yīng)立即對工作臺進行清潔。
3 Buffer A有很強的腐蝕性,切勿沾到皮膚或衣服上,否則應(yīng)立即用大量清水沖洗并擦干。
4 在整個檢測過程中應(yīng)注意避免交叉污染:提取核酸時應(yīng)用滅菌的鑷子夾取離心管;對離心管開蓋時應(yīng)避免粘在手上或濺出,否則要立即更換手套。
5 反應(yīng)液在使用前要徹底融化,并將反應(yīng)液與Taq酶瞬時離心將液體甩至管底。分裝反應(yīng)液時,應(yīng)盡量避免產(chǎn)生氣泡。上機前注意檢查各反應(yīng)管是否蓋緊,以免熒光物質(zhì)泄露污染儀器。
6 陽性對照在吸取前應(yīng)在微量漩渦振蕩器上劇烈振蕩1~2 sec。
7 試劑盒中各組分應(yīng)避免反復凍融。
8 對樣品及其廢棄物的操作應(yīng)嚴格遵守生物安全規(guī)定。
9 本試劑盒僅供獸醫(yī)及相關(guān)專業(yè)人士使用。
【聯(lián)系方式】
電話:18753190152
Q Q :3094970339
【歐萊博服務(wù)】
安裝
1:無需上門安裝調(diào)試,可電話指導,通電即可用
2:如果特別需要上門安裝,需收費用,按實際情況收費。
售后
1:質(zhì)保一年
2:小問題電話指導解決,大問題實在無法解決可安排工程師上門解決。
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1 用法
1.1 樣品處理
血液樣品直接用;淋巴結(jié)、脾臟、扁桃體樣品,用無菌的剪刀和鑷子剪取待檢樣品2.0 g于研缽中充分研磨,再加10.0 mL PBS(pH 7.2,含1萬單位青霉素和1萬單位鏈霉素)混勻(樣品不足2.0 g按1:5比例加PBS),對處理的待檢樣品置70℃,30 min滅活后,3 000 r/min,4 ℃離心5 min,取上清液,編號備用;血球粉處理同上,只不過省掉研磨步驟。
1.2 樣品存放
采集或處理好的樣品在2℃~8℃條件下保存應(yīng)不超過24 h;若需長期保存,須放置-80 ℃冰箱,但應(yīng)避免反復凍融(凍融不超過3次)。
1.3 操作步驟
1.3.1 病毒DNA的提?。ㄊ褂肁盒)
(1)待檢樣品、陽性對照和陰性對照的份數(shù)總和用n表示,取n個滅菌的1.5 mL離心管,逐管編號。
(2)每管加入Buffer A 500 mL。
(3)每管分別加入已處理的待檢樣品、陽性對照、陰性對照各200 mL,充分混勻,室溫放置10分鐘。
(4)取與上述離心管等量的DNase-Free吸附柱和收集管,編號。將離心管中的溶液轉(zhuǎn)移至DNase-Free吸附柱,(為避免堵塞吸附柱,盡量不要吸懸浮雜質(zhì))。
(5)13000 r/min室溫離心30 sec。
(6)棄去收集管液體,將吸附柱放回收集管中。
(7)吸附柱內(nèi)加入600 μL Buffer B,13000 r/min離心30 sec。
(8)棄去收集管液體,將吸附柱放回收集管中。
(9)重復步驟(7),(8)。
(10)13000 r/min空柱離心2 min,去除殘留液。
(11)將每個吸附柱分別移入新的1.5mL離心管中,向柱中央加入50 μL Buffer C,室溫靜置1 min,13000 r/min離心30 sec,離心管中液體即為模板DNA。獲得的DNA溶液,冰上保存?zhèn)溆茫ㄗ⒁馓崛〉腄NA須在2 h內(nèi)進行PCR 擴增,若需長期保存須
放置-80 ℃冰箱,但應(yīng)避免反復凍融)。
1.3.2 熒光PCR擴增(使用B盒)
(1)從試劑盒中取出熒光PCR反應(yīng)液、Taq酶,室溫融化后,2 000 r/min離心5 sec。設(shè)所需PCR管數(shù)為n(n = 樣本數(shù)+1管陰性對照+1管陽性對照),每個測試反應(yīng)體系需要20 μL 熒光PCR反應(yīng)液和0.5 μL Taq酶。計算好各試劑的使用量,加入一適當體積小管中,充分混合均勻后,向每個PCR管中各分裝20 μL。
(2)分別向上述PCR管中加入1.3.1(11)中制備的DNA溶液各5μL,蓋緊管蓋,500 r/min 離心30 sec。
(3)將加樣后的PCR管放入熒光PCR檢測儀內(nèi),作好標記。反應(yīng)參數(shù)設(shè)置:
第一階段,預變性95℃/3 min;第二階段,95℃/15 sec,52℃/10 sec,60℃/35 sec共45個循環(huán)。熒光收集在第二階段每次循環(huán)的60℃延伸時進行。
2 判定
2.1 結(jié)果分析條件的設(shè)定
閾值設(shè)定原則:根據(jù)儀器噪聲情況進行調(diào)整,以閾值線剛好超過陰性對照品擴增曲線的較高點為準。對于多通道熒光PCR儀,選定FAM(465-510)檢測通道讀取檢測結(jié)果,ABI儀器選擇FAM無熒光淬滅基團。
2.2 質(zhì)控標準
2.2.1 陰性對照無Ct值并且無擴增曲線。
2.2.2 陽性對照的Ct值應(yīng)小于等于28,并出現(xiàn)典型的擴增曲線。
2.2.3 如陰性和陽性對照不滿足以上條件,此次實驗視為無效。
2.3 結(jié)果判定
2.3.1 陰性:無Ct值,且無特征性擴增曲線,表明樣品為陰性。
2.3.2 陽性:Ct值≤38.0,且出現(xiàn)典型的擴增曲線,表示樣品為陽性。
2.3.3 Ct值大于38.0,且出現(xiàn)典型的擴增曲線的樣品建議復驗。復驗仍出現(xiàn)上述結(jié)果的,判為陽性,否則判為陰性。
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